heidolph
磺胺二甲嘧啶(SM )是畜牧生产中应用最广泛
的磺胺类药物之一。广泛用于畜禽疾病的治疗和预
防,食用含磺胺二甲嘧啶的动物组织,能导致机体发
生过敏反应,破坏机体正常菌群生态平衡,引起致病
菌产生耐药性|1]。我国、欧盟和FAO/wH0规定,
动物组织中SM 最高残留限量为100 ug/kg。畜牧
生产中应用的磺胺类药物进入外界环境,可能随污
水或地表径流,渗漏进入地下水或污染附近的池塘,
对水环境中的非靶生物可能产生毒性或在其体内富
集,造成环境污染[2]。由此引起的该药物在水产品
中的残留也受到关注。
在动物体内,磺胺二甲嘧啶主要经乙酰化酶代
谢形成N 一乙酰化磺胺二甲嘧啶(N 一ACE—
SM )L3州]。在人体内,N -ACE-SM 可逆转化成为
药物原形,从而具有药理活性。因而,N 一ACE—SM
的残留测定也是有必要的。日本规定磺胺二甲嘧啶
的残留标识物为磺胺二甲嘧啶原形和N -ACE—
SMz L6J。本文建立了磺胺二甲嘧啶原形和乙酰化磺
胺二甲嘧啶残留的高效液相色谱测定法。
l 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 标准品 磺胺二甲嘧啶,白色结晶,纯度>99 ,美国Sigma公司;N 一乙酰化磺胺二甲嘧啶,
白色结晶,由本实验室自行合成。
1.1.2 主要试剂 乙腈,色谱纯,Fisher公司;冰醋
酸:分析纯,北京化学试剂公司;正己烷,无水硫酸钠
和正丙醇:均为分析纯,北京化工厂。
1.1.3 主要仪器设备 高效液相色谱仪:SCL-
10AVP系统控制仪,DGU-12A 脱气装置SPDM10AVP
二极管阵列检测器,LC一10ATVP泵,
Class—VP工作站(日本Shimadzu公司)。调速多用
振荡器:HY一4型,常州同华电器有限公司。组织匀
浆机:Nissei AM-6,日本Ace公司。旋转蒸发器:
Laborota 4003型,德国Heidolph公司。离心机:
LD4-2A,北京医用离心机厂。电子天平:0.01 mg,
Sartorius公司。微量移液器:北京青云航空仪表有
限公司。磁力搅拌器:7 8-1型,浙江乐清乐成电器
厂。隔膜真空泵(GM-0.33)、溶剂过滤器,均为天津
市腾达过滤器件厂产品。SPE柱:Sep-Pak Vac
12cc(2g)碱性氧化铝柱,美国Waters公司。
1.2 试验方法
1.2.1 色谱条件 色谱柱:C e反相液相色谱柱,
Inertsil ODS-3(4.6 mm×250 mm,粒径5 m);流
动相:水一乙腈一乙酸(76:24:0.05,V/V/V);检测
波长:265 nm;进样量:50 ttL;流速:1 mL/mim。
1.2.2 标准溶液的配置 精密称取SM 和N 一
ACE-SMz各0.010 0 g,用乙腈溶解并定容至100
mL,配置成100 ttg/mL的2种标准贮备液,一20℃
避光保存。标准贮备液再用乙腈稀释,配置成浓度
为10 ttg/mL标准工作液,一20℃避光保存。
1.2.3 标准曲线绘制于测定当日用流动相将SM 、N 一ACE—SM 的标准工作液稀释,配制成浓度
为0.01、0.02、0.05、0.10、0.50、1.00 和2.50
t*g/mL的混合标准溶液,各取50 L进样,HPLC检
测,对峰面积积分。每一浓度进样5次,取平均值,
然后以浓度为横坐标,峰面积为纵坐标,分别绘制上
述2种化合物的标准曲线,求出回归曲线和相关系
数。
1.2.4 样品前处理
1.2.4.1 提取和净化:鲟鱼肌肉去皮,于15 000
r/rain匀浆3 rain后,准确称取2.00 g肌肉组织匀
浆,加入乙腈25 mL,无水硫酸钠4 g,中速振荡20
rain,3 000 r/rain离心5 rain。取上清于含30 mL
正己烷的100 mL分液漏斗中,振摇1 rain,静置20
rain,收集下层。分离后的残渣再用25 mL乙腈提
取1次,振荡20 rain后,3 000 r/rain离心5 rain。
倒入分液漏斗中振荡2 rain后静置分层,合并2次
所得的下层溶液,加入正丙醇10 mL,40℃下减压
蒸馏,残留物用5 mL乙腈一水(95:5,V/V)溶解。
1.2.4.2 萃取:预先用15 mL乙腈一水(95:5,
V/V)平衡Sep—Pak Vac 12cc(2g)碱性氧化铝柱,
然后上样,用5 mL乙腈一水(95:5,V/V)洗涤,不
收集;再用5 mL乙腈一水(75:25,V/V)洗脱,收集
洗脱液,氮气吹至近干,残留物用流动相定容至2.0
mL,所制样液用高效液相色谱仪进行检测。
1.2.5 回收率的测定设20、100、2 000 t*g/kg 3
个组织添加水平,并设空白对照,每个水平设5个平
行。分别称取匀浆肌肉组织2.00 g,添加一定体积
的标准工作液,使肌肉组织中药物浓度分别为20、
100、2 000 t*g/kg,涡动1 rain,静置10 rain,按样品
前处理方法进行处理后进HPLC分析。根据各组分的峰面积计算其浓度和回收率。
1.2.6 检测限的测定10个空白鲟鱼肌肉样品,每
个空白肌肉准确称取2.00 g,按样品前处理方法处
理,测得基线噪音值,按信噪比为3计算,求得鲟鱼肌
肉组织中SM。和N 一ACE-SM2测定方法的检测限。
1.2.7 精密度的测定 3 d内,每日准确称取匀浆
组织各2.00 g,每个浓度3个平行,分别添加一定体
积的标准溶液,使组织中SM 和N 一ACE—SM 药
物浓度为20、100、2 000 t,g/kg,涡动1 rain,静置1O
rain后,按样品前处理方法进行处理。El内每个浓
度取5个样品,每个样品重复进样测定5次,上述3
个添加浓度分别作3个El间重复。求各组分的峰面
积,计算2种药物在El内与El间回收率的平均值与
标准误。
2 结 果
2.1 标准曲线
取上述配制的各浓度的磺胺二甲嘧啶、N 一乙酰
化磺胺二甲嘧啶混合标准工作液在选定的色谱条件
下进行测定,在浓度为0.01~2.0 p.g/mI 范围内,
色谱峰面积与浓度呈线性相关。如表1所示,标准
品和样品的色谱图见图1。
表1 SM:、N‘一ACE-SM:标准曲线回归方程与相关系数
Table 1 Standard curves regression equations and
correlative coefficients of SM 2 and N‘-ACE-SM2
2.2 检测限
根据10个空白组织的基线噪音值,求其平均
值,以平均噪音的3倍计算检测限,求得肌肉组织中
SM,、N —ACE—SM2的检测限均为10.0 ttg/kg。
2.3 添加回收率和精密度
在20、100、2 000 ttg/kg(低、中、高)3个浓度的
添加水平,对鲟鱼肌肉样本进行添加回收试验,结果
见表2和表3。
表2 鲟鱼肌肉组织中SM:、N4_ACE—SM:的添
加回收率(n-5)
Table 2 Recovery of SM2 and N4_ACE·SM2
from fortified m uscles
3 讨 论
3.1 样品提取
关于肌肉组织中磺胺二甲嘧啶、N 一乙酰化磺胺
二甲嘧啶的提取方法,已有的报道大多用二氯甲
烷[川、乙腈 或偏磷酸一甲醇(2:1,V/V)[ 作提取
溶剂。用二氯甲烷提取时,组织漂浮在提取溶剂表
面,倾倒困难;使用偏磷酸一甲醇作提取溶剂,由于含
有大量的水分,造成减压蒸馏耗时费力;使用乙酸乙酯提取效率最高,但提取的组织内源性物质也最多,
净化较困难,净化方法还需要进一步研究。采用乙
腈作提取溶剂,提取效率较低,但增加提取溶剂的
量,可获得满意的回收率,另外用乙腈提取时***提的
杂质也较少。经过反复试验,用25 mL乙腈,提取2
次,可将目标分析物提取出来。
盐析会促进溶质的析出,可提高有机溶剂提取
效果。本试验在提取溶剂中加入无水NazSO ,提
高了磺胺二甲嘧啶和N 一乙酰化磺胺二甲嘧啶的提
取效率,当Na SO 加至4 g时,回收率不再增加。
因此,选用添加无水硫酸钠的量为4 g。
3.2 样品净化
样品净化是样品前处理步骤中关键的一步,选
择SPE柱的种类尤为重要,它直接关系到方法的回
收率。文献报道用于净化的SPE柱有C。。柱[3 ],本
方法选用的碱性氧化铝柱为正相柱,洗脱溶剂黏滞
系数小,自然状态下很快流干,操作较简单。
3.3 检测
磺胺类药物的检测,文献报道有紫外检测器、荧
光检测器和电化学检测器。电化学检测器的电极需
要稳定的时间较长,样品杂质容易污染电极。荧光
检测器的灵敏度和选择性比紫外检测器高。SM
用荧光胺衍生化后生成的产物具有荧光性,但N 一
ACE—SM 不能用荧光胺衍生化,限制了荧光检测器
的应用。紫外检测器为目前测定磺胺类药物最常用
的检测器,可直接测定,无需衍生化,简捷迅速。我
们采用二极管阵列检测器检测,选取两种药物光谱
图的最大吸收波长作测定波长。光谱见图2。
3.4 回收率与检测限
在本试验条件下,对鲟鱼肌肉组织在20、100、
2 000 ttg/kg添加浓度范围内,磺胺二甲嘧啶、N 一乙
酰化磺胺二甲嘧啶的检测限均为10.0“g/kg。Ho—
rie等L7 报道用于测定肌肉中上述两种药物方法的
检测限为20.0 gg/kg,本方法的检测限低于文献报
道值;回收率与之接近,但本方法操作较简单。
3.5 操作注意事项
磺胺类药物在高温、光线直射、空气暴露等环境
条件下,会部分降解氧化损失,故在样品提取净化
操作过程中,要尽可能在避光、室温小于25℃条件
下操作,所用的器皿也应尽可能采用棕色;标准液
及样液应在冷藏、避光条件下保存;样液也应尽快分
析。本试验结果表明,100 ttg/mL 的标准液在
一20℃、黑暗条件下可保存6个月。
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